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1.信号弱
| 可能原因 | 解决方法 |
| 试剂盒没有充分平衡 | 试剂室温平衡至少20分钟，确保所有试剂已平衡至室温 |
| 孔内注入底物量不足 | 检查吸液枪的功能，必要时进行校准。确保枪头与枪紧密地结合。使用同样的方法反复分析 |
| 孵育的时间或者温度不够 | 校正温育箱温度，避免在周围环境条件变化大的区域（如：在通风口或窗边处）孵育酶标板 |
| 配制缓冲液的蒸馏水有问题 | 使用新鲜合格的蒸馏水 |
| 对照设置不当 | 按照试剂盒的推荐，确保设置与对照孔的正确使用 |
| 酶标仪滤光片不正确 | 检查酶标仪使用的滤光片，如用TMB显色，应选用450nm的滤光片 |
| 显色反应时间太短 | 延长显色时间 |
| 不正确的试剂储存方式 | 按照说明书要求保存试剂盒 |
| 试剂混用 | 不同批号试剂勿混用，如有必要请咨询生厂商 |
2.重复性差
| 可能原因 | 解决办法 |
| 洗板不彻底 | 确保洗板仪正常工作。不要减少洗液量、洗板次数或浸泡时间 |
| 污染 | 因唾液或皮肤可能含有分析物，因此在实验过程中，要带上口罩和手套 |
| 加样本及试剂量不准，加样本及试剂量不准孔间不一致 | 重复某一样品时，加样时间尽可能与第一次接近； 重复测定标本，操作条件、人员等应尽可能与上次保持一致，以排除这些因素造成的不一致 |
| 孔内试剂未充分混合 | 不要使孔过于干燥。确保孔内试剂混合充分 |
| 加入孔内的试剂量不等 | 检查吸液管（枪）的功能，必要时进行校准 |
| 加样本及试剂时，加在孔壁上部非包被区 | 加样枪头不要贴壁 |
| 重复利用枪头或者试剂容器 | 在每次加标准品、样品或试剂之前，应更换枪头。每次配试剂时应更换新的容器 |
| 重复利用酶标板封板膜 | 在每次孵育阶段，按试剂盒内推荐，使用新的封板膜 |
3.数据降低
| 可能原因 | 解决办法 |
| 不恰当的数据处理方法 | 按照试剂盒内的推荐，使用数据处理方法。其他处理方法可能会降低标准曲线的精确度。 |
| 标准曲线未经分析 | 如果没有计算机软件，使用对数纸绘制标准曲线并对对数变化进行回归分析。另外的标准曲线必须与每次分析相符合。试剂盒内所提供的标准曲线仅供参考，并不能用于计算结果。 |
| 样本稀释 | 做好预实验，选择好合适的稀释比例，尽量使样本浓度处在最佳的检测范围 |
| Hook效应 | 样本浓度如果远高于试剂盒的检测范围，而样本没有稀释到合理的范围，会导致hook效应，致使结果呈现假阴性 |
4.高背景/非特异性染色
| 结果描述 | 可能的原因 | 解决方法 |
| 终止后，整板结果显现均一的黄色或淡黄色；或标曲有线性但背景过高 | 整板发黄现象可能由于错加其他试剂造成 | 实验前检查试剂的组分及批号，确认所有组分均属于对应的试剂盒。不同试剂盒或不同批号的试剂不能混用。 |
| 未充分清洗酶标板 | 确保清洗过程中每个微孔所加入洗涤液量一致。清洗完成后，将酶标板用力按压在吸水纸上，以除去残余的缓冲液。 | |
| 孵育时间过长 | 严格按照说明书操作。 | |
| 酶标记物污染了吸头及盛放显色剂容器或阳性对照污染了微孔 | 吸取不同的试剂时应更换吸头，配置不同的试剂组分时，应使用不同的储液器皿。操作时请使用移液器。 | |
| 检测抗体或Avidin-HRP的浓度过高 | 检查浓度计算是否正确或进一步稀释后再使用。 | |
| 底物在使用前曝光或污染 | 加入底物前，应始终避光保存。 | |
| 显色时间过长 | 延长显色时间 | |
| 读取吸光值时使用了错误的滤光片 | TMB为底物时应在450nm波长读取吸光值，并以650nm作为校正波长。 |
5.白板
| 结果描述 | 可能的原因 | 解决方法 |
| 显色步骤结束后，酶标板所有孔均无颜色。阳性对照不显色 | 组分试剂混淆使用 | 配制或使用时应看清楚标签。 |
| 洗板及加样过程中，酶标物受污染失活失去催化显色剂显色的能力 | 确认盛酶标的容器不含酶抑制剂（如NaN3等），确认配制洗液的容器已洗干净。 | |
| 遗漏了某种试剂或某个步骤 | 详细审阅说明书，并严格遵循操作步骤。 |
6.显色淡
| 结果描述 | 可能的原因 | 解决方法 |
| 包括标曲、样本在内的所有板孔颜色均较淡。 | 试剂盒超过有效期或储存不当 | 请在有效期内使用，并按照说明书推荐的保存条件保存，避免污染。 |
| 试剂、样品用前未平衡 | 所有试剂、样品应置室温平衡 30min左右。 | |
| 移液器吸量不足，移液抽吸排放太快，吸头内壁挂液太多或内壁不清洁 | 校正移液器，吸头要配套，每次吸头要吻合紧密。移液不宜过快，排放应完全。吸头内壁要清洁，最好一次性使用。 | |
| 孵育反应时间不足 | 定时器准确定时 | |
| 显色反应时间不足 | 一般在15-30min，20min为佳，特殊除外。 | |
| 显色剂加入顺序颠倒（双组分） | 请严格按说明书。 | |
| 洗涤次数增加，浓缩洗液稀释倍数不符合要求 | 配制好的洗液一定要检测PH值是否呈中性。 | |
| 蒸馏水水质有问题 | TMB为底物时应在450nm波长读取吸光值，并以650nm作为校正波长。 | |
| 洗板及加样过程中，酶标物受污染失活而失去催化显色剂显色的能力 | 确认盛酶标的容器不含酶抑制剂（如NaN3等），确认配制洗液的容器已洗干净，确认配制洗液的纯化水达到要求且未受污染。 | |
| 标曲正常，样本显色较淡 | 样本使用NaN3防腐，抑制了酶的反应 | 样本不可使用NaN3。 |
| 待测标本中可能不含强阳性标本，故结果可能是正常的 | 如有怀疑，可复检。 | |
| 目测结果正常，但酶标仪读值偏低 | 读取吸光值时使用了错误的滤光片 | TMB为底物时应在450nm波长读取吸光值，并以650nm作为校正波长。 |
7.标准曲线不佳/重复性不好
| 结果描述 | 可能的原因 | 解决方法 |
| 重复性差 | 标准品配制有误 | 严格按照说明书标准品配制进行操作。仅使用推荐的稀释液对标准品进行稀释。 |
| 试剂盒储存方法不当或储存环境太差 | 请在说明书推荐的保存条件下保存，不要将重悬后的组分在室温放置时间过长。 | |
| 过早稀释各工作组分 | 各工作组分请在使用前10分钟配制，并立即加入到微孔中。 | |
| 样本加入后未混匀 | 针对同时加入多种试剂组分，加样后在混匀器上充分混匀。注意稳拿稳放，防止外溅。 | |
| 酶标仪测定重复性差 | 校准酶标仪。 | |
| 孵育时间、洗涤条件、显色条件、操作人员不一致 | 重复测定标本，反应条件、人员等尽可能与上次保持一致。 | |
| 洗涤不正确 | 移液器准确加入200μl/孔洗涤液或注满各孔，但不要溢出。洗板机洗板时不应有堵孔，洗涤应充分。 | |
| 孵育温度恒温效果不好 | 保证温度恒定，避免局部温度过高过低。 | |
| 加液时，过多残留于孔壁上 | 加液时，吸头在不碰到孔底的前提下尽量沿着孔壁下方加液。 | |
| 耗材重复使用 | 吸取不同的试剂时应更换吸头，配置不同的试剂组分时，应使用不同的储液器皿。 | |
| 微孔底部被划伤或存在污垢 | 操作时细心，注意不要触碰底部。擦拭酶标板底部，以去除污垢或指纹。 | |
| 阈值附近时阴时阳 | 同一样品做3个复孔，以2个（含2个以上相同结果为准）。 | |
| 加样时交叉污染 | 加标本时尽量避免交叉污染。 | |
| 出现随机性的花板、跳孔现象 | 手工洗板造成的交叉污染 | 手工洗板时前 3次注洗液后应立即弃去，后几次再设定浸泡时间，可减少交叉污染。 |
| 拍板时交叉污染 | 拍板时用合适的吸水纸巾，不要把无关物质拍进板孔，并尽量不要在同一位置拍，以免交叉污染。 | |
| 洗板机加液头堵塞导致加液不满或吸液残留量较大，造成花板、跳孔 | 疏通加液头，使洗板时每孔均注满洗液，吸液时残留量要小。 | |
| 样本离心处理不全，致使反应孔内发生凝血现象或存在沉淀物或残留细胞成分干扰 | 血清血浆应充分离心，3000rpm 6min以上。 | |
| 样品放置时间过长，污染 | 样品应保持新鲜，或低温保存，防止污染。 | |
| 洗涤液配制有误或直接误用浓缩洗涤液 | 按说明书配制。 |
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